在腦損傷大鼠上開展的實驗表明,，通過頸動脈注射的干細胞能直接到達大腦，并極大地促進了大腦功能的恢復,，研究結(jié)果由Lippincott Williams和Wilkins發(fā)表于2月刊的Neurosurgery雜志上,。
頸動脈注射技術(shù)--結(jié)合某種形式的體內(nèi)光學成像來跟蹤移植后的干細胞--這可能是人類腦外傷（TBI）中干細胞移植的新方法的一部分，根據(jù)日本北海道大學Toshiya Osanai博士領(lǐng)導的一項新研究,。
先進的成像技術(shù)使研究人員能夠追蹤干細胞
研究人員在大鼠中評估了干細胞移植的一種新的"動脈"技術(shù),。在誘導TBI后的7天內(nèi)，由大鼠骨髓制備的干細胞注射入頸動脈,。目的是將干細胞直接遞送至大腦,，而無需使它們通過大循環(huán),。
在注射前，干細胞被標記上"量子點"--使用納米技術(shù)創(chuàng)造的一種生物相容性,、熒光半導體,。量子點能發(fā)出近紅外光波，具有更長的波長,，能夠穿透骨骼和皮膚,。這使得研究人員在移植后的4周里能對干細胞進行無創(chuàng)監(jiān)測。
使用這種體內(nèi)光學成像技術(shù),，Osanai博士和他的同事們能夠看到,，注射的干細胞穿過了大腦的"第一關(guān)"，而沒有進入大循環(huán),。在3個小時內(nèi),，干細胞開始從大腦毛細血管遷移到腦損傷部位。
在4周后,，接受干細胞移植的大鼠,，其運動功能顯著恢復，而未接受干細胞的大鼠沒有恢復,。對接受干細胞移植的大鼠大腦進行檢查,，證實了干細胞已轉(zhuǎn)化成不同類型的腦細胞，參與了受損大腦區(qū)域的愈合,。
人類腦損傷干細胞治療的進一步發(fā)展
干細胞有可能成為治療大腦損傷（包括腦外傷和中風）的一種重要的新療法,。骨髓干細胞，正如在該研究中使用的一樣,，是一個有前景的供體細胞來源,。然而，還存在很多問題,，諸如移植的最佳時機,、劑量及干細胞遞送路線。
在這項新的動物試驗中,，在TBI之后的一周進行了干細胞移植--這是"臨床相關(guān)"的時間,，因為從骨髓中制備干細胞需要至少一周的時間。頸動脈注射干細胞是一個相對簡單的程序,，將細胞直接遞送至大腦,。
實驗的證據(jù)表明，干細胞治療能夠促進腦外傷的愈合,，顯著地恢復大腦的功能,。通過使用體內(nèi)光學成像，該項研究首次成功地在活體動物大腦內(nèi)對動脈內(nèi)移植的干細胞進行了長達4周的追蹤監(jiān)測,。一些類似的成像技術(shù)在人類中檢測移植后的干細胞的作用可能會非常有用,。然而,，在人類患者中追蹤干細胞可能會有難度，因為人類的頭骨和頭皮遠比大鼠的要厚得多,。"將體內(nèi)光學成像應(yīng)用于臨床還需要進行進一步的研究,，"研究人員補充道。（生物谷bioon.com）
doi:10.1227/NEU.0b013e318230a795
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Therapeutic Effects of Intra-Arterial Delivery of Bone Marrow Stromal Cells in Traumatic Brain Injury of Rats—In Vivo Cell Tracking Study by Near-Infrared Fluorescence Imaging.
Toshiya Osanai, Satoshi Kuroda, Taku Sugiyama, Masahito Kawabori, Masaki Ito, Hideo Shichinohe, Yuji Kuge, Kiyohiro Houkin, Nagara Tamaki, Yoshinobu Iwasaki.
Abstract： BACKGROUND: A noninvasive and effective route of cell delivery should be established to yield maximal therapeutic effects for central nervous system (CNS) disorders. OBJECTIVE: To elucidate whether intra-arterial delivery of bone marrow stromal cells (BMSCs) significantly promotes functional recovery in traumatic brain injury (TBI) in rats. METHODS: Rat BMSCs were transplanted through the ipsilateral internal carotid artery 7 days after the onset of cortical freezing injury. The BMSCs were labeled with fluorescent dye, and in vivo optical imaging was employed to monitor the behaviors of cells for 4 weeks after transplantation. Motor function was assessed for 4 weeks, and the transplanted BMSCs were examined using immunohistochemistry. RESULTS: In vivo optical imaging and histologic analysis clearly demonstrated that the intra-arterially injected BMSCs were engrafted during the first pass without systemic circulation, and the transplanted BMSCs started to migrate from the cerebral capillary bed to the injured CNS tissue within 3 hours. Intra-arterial BMSC transplantation significantly promoted functional recovery after cortical freezing injury. A subgroup of BMSCs expressed the phenotypes of neurons, astrocytes, and endothelial cells around the injured neocortex 4 weeks after transplantation.
