6月15日,據(jù)香港《文匯報(bào)》報(bào)道，美國(guó)馬薩諸塞州總醫(yī)院研究員成功利用老鼠細(xì)胞,，在實(shí)驗(yàn)室培植出人造肝,。科學(xué)家希望這項(xiàng)研究5年內(nèi)可在醫(yī)院應(yīng)用,，協(xié)助人類培植肝臟,。
馬薩諸塞州總醫(yī)院研究員先去掉老鼠肝臟上的細(xì)胞，剩下一個(gè)“支架”,，然后將2億個(gè)健康的肝細(xì)胞分4次,、每次10分鐘注射到支架上進(jìn)行培植，成功培植出人造老鼠活肝,，在實(shí)驗(yàn)室存活10天之久,，并能夠分解毒素；另外,，研究員還將人造肝移植到老鼠身上,，發(fā)現(xiàn)它能正常運(yùn)作數(shù)小時(shí)。有關(guān)報(bào)告刊登在《自然醫(yī)學(xué)》雜志上,。
實(shí)驗(yàn)中只使用了一種肝細(xì)胞,，培植出的人造肝也只能發(fā)揮正常肝功能的一小部分作用。
研究員稱,，今后將實(shí)驗(yàn)加入肝臟所需的其它細(xì)胞,，并研究令培植肝長(zhǎng)期正常運(yùn)作，以便最終能移植到人體內(nèi)。
臺(tái)灣中國(guó)時(shí)報(bào)報(bào)道,，美國(guó)醫(yī)學(xué)界表示,，已經(jīng)在實(shí)驗(yàn)室以人工方式培養(yǎng)出肝臟，這是前所未有的重大突破,，未來(lái)可望朝“訂做器官”邁進(jìn)，造福數(shù)十萬(wàn)肝臟有病,、受損的病患,。然學(xué)者也審慎表示，這項(xiàng)科技仍有不少障礙有待克服,。
這項(xiàng)實(shí)驗(yàn)系由“麻州總醫(yī)院醫(yī)技中心”完成,。制造肝臟移植體共分四步驟；
一,、用消毒水沖洗捐贈(zèng)但有受損的肝臟,，除去受損的細(xì)胞；
二,、剩下的膠原蛋白及血管充當(dāng)“骨架”,；
三、利用由患者皮膚細(xì)胞制造的干細(xì)胞,，造出大量健康的“hepatocyte”型肝細(xì)胞,，附著到“骨架”上；
四,、新的肝臟系由病患自己的細(xì)胞制成,，用來(lái)取代受損器官，免疫系統(tǒng)不會(huì)排斥,。
這項(xiàng)實(shí)驗(yàn)成果,，發(fā)表在《自然醫(yī)學(xué)》期刊。論文指出,，新肝臟移植體在人工血液補(bǔ)給下,，可以在培養(yǎng)皿內(nèi)存活達(dá)十天。研究團(tuán)隊(duì)曾把移植體植入大鼠體內(nèi),，并不摘除大鼠原有肝臟,，大鼠可以活上好幾個(gè)小時(shí)。
英國(guó)《每日郵報(bào)》十四日?qǐng)?bào)道,，研究團(tuán)隊(duì)主持人烏依（Korkut Uygun）博士表示,，就團(tuán)隊(duì)所知，在實(shí)驗(yàn)室造出可堪移植的肝臟移植體,，這是第一次,，而且經(jīng)過(guò)測(cè)試，肝臟移植體可以分解人體有害毒質(zhì)，一如真正的肝臟,。
但烏依也指出,，盡管成果令人振奮，但這只是一項(xiàng)概念驗(yàn)證式的實(shí)驗(yàn),；想造出真能植入人體的肝臟,，且肝功能完整而長(zhǎng)久，尚待進(jìn)行的工作還很多,。
倫敦帝國(guó)理工學(xué)院腸胃肝臟學(xué)教授表示,，想造出能自行運(yùn)作的肝臟，先得克服幾大課題,，例如除了“hepatocyte”,，肝臟另有其他型細(xì)胞，必須俱全,，功能才會(huì)正常,。(生物谷Bioon.net)
生物谷推薦原文出處：
Nature Medicine doi:10.1038/nm.2170
Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix
Basak E Uygun1, Alejandro Soto-Gutierrez1,6, Hiroshi Yagi1,6, Maria-Louisa Izamis1, Maria A Guzzardi1,2, Carley Shulman1, Jack Milwid1, Naoya Kobayashi3, Arno Tilles1, Francois Berthiaume1,4, Martin Hertl5, Yaakov Nahmias1,6, Martin L Yarmush1,4 & Korkut Uygun1
Orthotopic liver transplantation is the only available treatment for severe liver failure, but it is currently limited by organ shortage. One technical challenge that has thus far limited the development of a tissue-engineered liver graft is oxygen and nutrient transport. Here we demonstrate a novel approach to generate transplantable liver grafts using decellularized liver matrix. The decellularization process preserves the structural and functional characteristics of the native microvascular network, allowing efficient recellularization of the liver matrix with adult hepatocytes and subsequent perfusion for in vitro culture. The recellularized graft supports liver-specific function including albumin secretion, urea synthesis and cytochrome P450 expression at comparable levels to normal liver in vitro. The recellularized liver grafts can be transplanted into rats, supporting hepatocyte survival and function with minimal ischemic damage. These results provide a proof of principle for the generation of a transplantable liver graft as a potential treatment for liver disease.
